Preview

Российский биотерапевтический журнал

Расширенный поиск

ИММУНОЛОГИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ КОСТНОГО МОЗГА БОЛЬНЫХ НЕМЕЛКОКЛЕТОЧНЫМ РАКОМ ЛЕГКОГО

https://doi.org/10.17650/1726-9784-2019-19-2-47-54

Полный текст:

Аннотация

Введение Костный мозг – место генерации значительной части иммунокомпетентных клеток и в то же время периферический лимфоидный орган, в котором накапливаются эффекторные клетки и клетки памяти противоопухолевого иммунитета. Этот орган еще недостаточно изучен при опухолях.
Цель исследования – изучение иммунокомпетентных клеток костного мозга пациентов с немелкоклеточным раком легкого.
Материалы и методы В исследовании участвовали 68 больных, у которых были диагностированы плоскоклеточный рак легкого (n = 28), аденокарцинома (n = 38) и другие формы рака легкого (n = 2). Во всех случаях, помимо стандартных методов диагностики и стадирования, исследовали костный мозг больных – морфологию (миелограмму) и субпопуляции лимфоцитов. При изучении субпопуляционного состава применяли метод многоцветной проточной цитометрии. Изучены Т-клетки и их субпопуляции, В-лимфоциты, NK-клетки, перфоринсодержащие лимфоциты, экспрессия костимуляторной молекулы CD27.
Результаты В ходе исследования плоскоклеточный рак легкого характеризовался более высоким содержанием костномозговых зрелых Т-клеток (CD3) и CD8-лимфоцитов. Для аденокарциномы была типичной В-клеточная реакция (CD20). Эффекторные (перфоринсодержащие) популяции лимфоцитов костного мозга также имели связь с гистологическим диагнозом рака легкого: для аденокарциномы были более типичны CD4-положительные цитотоксические лимфоциты и экспрессия на эффекторах CD27. Перфоринсодержащие лимфоидные клетки костного мозга находились в реципрокных отношениях с эритрокариоцитами.
Заключение Субпопуляционный состав клеток костного мозга имеет взаимосвязь с гистологическим вариантом рака и эритропоэзом у больных раком легкого.

Об авторах

Н. Н. Тупицын
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина» Минздрава России
Россия

Николай Николаевич Тупицын

115478 Москва, Каширское шоссе, 24



Т. М. Джуманазаров
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина» Минздрава России
Россия
115478 Москва, Каширское шоссе, 24


А. Д. Палладина
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина» Минздрава России
Россия
115478 Москва, Каширское шоссе, 24


А. К. Алахвердиев
ГБУЗ г. Москвы «Московский клинический научно-практический центр им. А.С. Логинова Департамента здравоохранения г. Москвы»; ФГБОУ ДПО «Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования» Минздрава России
Россия

111123 Москва, шоссе Энтузиастов, 86

125993 Москва, ул. Баррикадная, 2/1, стр. 1



С. В. Чулкова
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина» Минздрава России; ФГAOУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России
Россия

115478 Москва, Каширское шоссе, 24

117997 Москва, ул. Островитянова, 1а



П. В. Кононец
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина» Минздрава России
Россия
115478 Москва, Каширское шоссе, 24


Список литературы

1. Steven A., Fischer S.A., Robinson B.W. Immunotherapy for lung cancer. Respirology 2016;21:821–33. DOI: 10.1111/resp.12789.

2. Buchan S.L., Anne Rogel A., AlShamkhani A. The immunobiology of CD27 and OX40 and their potential as targets for cancer immunotherapy. Blood 2018;131(1):39–48. DOI: 10.1182/blood-2017-07-741025.

3. Buchan S., Manzo T., Flutter B. et al. OX40- and CD27-mediated costimulation synergizes with antiPD-L1 blockade by forcing exhausted CD8+ T cells to exit quiescence. J Immunol 2015;194(1):125–33. DOI: 10.4049/jimmunol.1401644.

4. Takeuchi A., Saito T. CD4 CTL a cytotoxic subset of CD4+ T-cells, their differentiation and function. Front Immunol 2017;8:194. DOI: 10.3389/fimmu.2017.00194.

5. Mahnke Y.D., Brodie T.M., Sallusto F. et al. Who’s who of T-cell differentiation: human memory T-cell subsets. Eur J Immunol 2013;43(11):2797–809. DOI: 10.1002/eji.201343751.

6. Тупицын Н.Н., Зейналова П.А., Френкель М.А. и др. Роль костного мозга в прогнозе диффузной В-крупноклеточной лимфомы. Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии 2015;4:40–7. [Tupitsyn N.N., Zeynalova P.A., Frenkel M.A. et al. The role of bone marrow in the prognosis of diffuse B-large cell lymphoma. Voprosy biologicheskoy, meditsinskoy i farmatsevticheskoy khimii = Problems of Biological, Medical and Pharmaceutical Chemistry 2015;4:40–7. (In Russ.)].

7. Тупицын Н.Н., Фалалеева Н.А., Моженкова А.В. и др. Роль костного мозга в прогнозе фолликулярной лимфомы. Российский биотерапевтический журнал 2016;15(3):99–102. DOI: 10.17650/1726-9784-2016-15-3-99-102. [Tupitsyn N.N., Falaleeva N.A., Mozhenkova A.V. et al. The role of bone marrow in the prognosis of follicular lymphoma. Rossiyskiy bioterapevticheskiy zhurnal = Russian Biotherapeutic Journal 2016;15(3):99–102. (In Russ.)].

8. Фалалеева Н.А., Моженкова А.В., Османов Е.А. и др. Особенности эритропоэза больных фолликулярной лимфомой. Вестник ФГБУ «РОНЦ им. Н.Н. Блохина» 2016;(3):35–8. [Falaleeva, N.A., Mozhenkova A.V., Osmanov E.A. et al. Features of erythropoiesis of patients with follicular lymphoma. Vestnik FGBU “RONTS im. N.N. Blokhina” = Journal of N.N. Blokhin Russian Cancer Research Center 2016;(3):35–8. (In Russ.)].

9. Тупицын Н.Н., Чэн Ц., Зейналова П.А. Иммунофенотипическое изучение дифференцировки эритрокариоцитов костного мозга у больных диффузной В-крупноклеточной лимфомой. Российский биотерапевтический журнал 2018;17(4):52–7. DOI: 10.17650/1726-9784-2018-17-4-52-57. [Tupitsyn N.N., Jiao C., Zeynalova P.A. Immunophenotypic study of bone marrow erythrokaryocyte differentiation in patients with diffuse large B-cell lymphoma. Rossiyskiy bioterapevticheskiy zhurnal = Russian Journal of Biotherapy 2018;17(4):52–7. (In Russ.)].

10. Chernysheva O., Markina I., Demidov L. et al. Bone marrow involvement in melanoma. Potentials for detection of disseminated tumor cells and characterization of their subsets by flow cytometry. Cells 2019;8(6):627. DOI: 10.3390/cells8060627.

11. Tupitsyn N.N., Mkrtchan V.A., Palladina A.D. et al. Bone marrow lymphocyte populations of innate immunity in breast cancer patients. GJMR 2020;20(2):20–7. DOI: 10.34257/GJMRFVOL20IS2PG21.


Для цитирования:


Тупицын Н.Н., Джуманазаров Т.М., Палладина А.Д., Алахвердиев А.К., Чулкова С.В., Кононец П.В. ИММУНОЛОГИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ КОСТНОГО МОЗГА БОЛЬНЫХ НЕМЕЛКОКЛЕТОЧНЫМ РАКОМ ЛЕГКОГО. Российский биотерапевтический журнал. 2020;19(2):47-54. https://doi.org/10.17650/1726-9784-2019-19-2-47-54

For citation:


Tupitsyn N.N., Dzhumanazarov T.M., Palladina A.D., Alakhverdiyev A.K., Chulkova S.V., Kononets P.V. IMMUNOLOGICAL PARAMETERS OF BONE MARROW IN NON-SMALL CELL LUNG CANCER. Russian Journal of Biotherapy. 2020;19(2):47-54. (In Russ.) https://doi.org/10.17650/1726-9784-2019-19-2-47-54

Просмотров: 27


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1726-9784 (Print)
ISSN 1726-9792 (Online)