Preview

Российский биотерапевтический журнал

Расширенный поиск

Разработка тест-системы на основе иммуноферментного анализа для детекции рекомбинантного пневмолизина Streptococcus pneumoniae

https://doi.org/10.17650/1726-9784-2023-22-4-52-59

Аннотация

Введение. Пневмолизин (Ply) – гемолитический токсин Streptococcus pneumoniae (S. pneumoniae), экспрессируемый всеми штаммами пневмококка. Для его качественного и количественного определения в биологических жидкостях простым, быстрым и эффективным способом может быть использование сэндвич-ИФА (иммуноферментного анализа).

Цель исследования – разработать и оценить специфичность сэндвич-ИФА тест-системы для качественного и количественного определения рекомбинантного Ply (rPly) S. pneumoniae.

Материалы и методы. В качестве распознающих антител в сэндвич-ИФА использовали кроличьи поликлональные антитела (ПкАТ) к rPly, иммобилизованные на твердой фазе. К ПкАТ (rPly) прибавляли исследуемые антигены (АГ). Реакцию проявляли детектирующими мышиными моноклональными иммуноглобулинами – IgG1 (rPly) – антителами, конъюгированными с пероксидазой корня хрена. Специфичность тест-системы оценивали при использовании в качестве референс-препаратов рекомбинантного α-гемолизина (rα-Hly) и водорастворимых АГ Staphylococcus aureus (S. aureus).

Результаты. С помощью сэндвич-ИФА rPly выявлен в концентрации 0,15 мкг / мл. Тест-система характеризовалась специфичностью, что подтверждено отсутствием реакции с rα-Hly S. aureus. Референс-препараты водорастворимых поверхностных АГ штаммов S. aureus № 209, 1986, 1991 и Cowan I давали ложноположительную реакцию за счет присутствия в их составе протеина А (SpA) – термостабильного поверхностного белка, экспрессируемого многими штаммами стафилококка, способного связывать иммуноглобулины через Fc-фрагмент или Fabфрагменты V3H домена В-клеточного рецептора. Отрицательная реакция получена с АГ из штамма S. aureus wood 46, не имеющего гена spa, кодирующего экспрессию SpA. Присутствие SpA в препаратах водорастворимых АГ S. aureus подтверждено в реакции ингибирования при ИФА.

Заключение. Разработан сэндвич-ИФА для качественного и количественного определения Ply S. pneumoniae. Проведенные исследования подтвердили специфичность тест-системы.

Об авторах

Е. А. Курбатова
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток им. И. И. Мечникова»
Россия

105064 Москва, Малый Казенный пер., 5А



И. В. Яковлева
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток им. И. И. Мечникова»
Россия

105064 Москва, Малый Казенный пер., 5А



Н. Ф. Гаврилова
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток им. И. И. Мечникова»
Россия

105064 Москва, Малый Казенный пер., 5А



Д. С. Воробьев
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток им. И. И. Мечникова»
Россия

105064 Москва, Малый Казенный пер., 5А



Е. С. Петухова
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток им. И. И. Мечникова»
Россия

105064 Москва, Малый Казенный пер., 5А



И. Б. Семенова
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток им. И. И. Мечникова»
Россия

105064 Москва, Малый Казенный пер., 5А



А. Е. Зайцев
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток им. И. И. Мечникова»
Россия

105064 Москва, Малый Казенный пер., 5А



Ю. В. Волох
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток им. И. И. Мечникова»
Россия

105064 Москва, Малый Казенный пер., 5А



А. Ю. Леонова
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток им. И. И. Мечникова»
Россия

105064 Москва, Малый Казенный пер., 5А



А. В. Поддубиков
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток им. И. И. Мечникова»
Россия

105064 Москва, Малый Казенный пер., 5А



А. А. Калошин
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток им. И. И. Мечникова»
Россия

105064 Москва, Малый Казенный пер., 5А



И. М. Грубер
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток им. И. И. Мечникова»
Россия

105064 Москва, Малый Казенный пер., 5А

 



Список литературы

1. Grousd J.A., Rich H.E., Alcorn J.F. Host-pathogen interactions in gram-positive bacterial pneumonia. Clin Microbiol Rev 2019; 32:e00107-18. DOI: 10.1128/CMR.00107-18

2. Hageman J.C, Uyeki T.M, Francis J.S. et al. Severe community-acquired pneumonia due to Staphylococcus aureus, 2003-04 influenza season. Emerg Infect Dis 2006;12:894–9. DOI: 10.3201/eid1206.051141

3. Jahn K., Kohler T.P., Hammerschmidt S. et al. Bacterial adhesins and the pneumococcus. Cells 2022;11:1121. DOI: 10.3390/cells11071121

4. Cockeran R., Anderson R., Feldman C. The role of pneumolysin in the pathogenesis of Streptococcus pneumoniae infection. Curr Opin Infect Dis 2022;15(3):235–9. DOI: 10.1097/00001432-200206000-00004

5. Bubeck Wardenburg J., Bae T., Otto M. et al. Poring over pores: Alpha-hemolysin and panton-valentine leukocidin in Staphylococcus aureus pneumonia. Nat Med 2022;13(12): 1405–6. DOI: 10.1038/nm1207-1405

6. Kebaier C., Chamberland R.R., Allen I.C. et al. Staphylococcus aureus alpha-hemolysin mediates virulence in a murine model of severe pneumonia through activation of the NLRP3 inflammasome. J Infect Dis 2012;205(5):807–17. DOI: 10.1093/infdis/jir846

7. Cohen T.S., Jones-Nelson O., Hotz M. et al. S. aureus blocks efferocytosis of neutrophils by macrophages through the activity of its virulence factor alpha toxin. Sci Rep 2016;6:35466. DOI: 10.1038/srep35466

8. Kitur K., Parker D., Nieto P. et al. Toxin-induced necroptosis is a major mechanism of Staphylococcus aureus lung damage. PLoS Pathog 2015;11(4):e1004820. DOI: 10.1371/journal.ppat.1004820

9. Mitchell T.J., Dalziel C.E. The biology of pneumolysin. Subcell Biochem 2014;80:145–60. DOI: 10.1007/978-94-017-8881-6_8

10. Gingerich A.D., Mousa J.J. Diverse mechanisms of protective anti-pneumococcal antibodies. Front Cell Infect Microbiol 2022;12:824788. DOI: 10.3389/fcimb.2022.824788

11. Wheeler J., Freeman R., Steward M. et al. Detection of pneumolysin in sputum. J Med Microbiol 1999;48(9):863–6. DOI: 10.1099/00222615-48-9-863.8

12. Rajalakshmi B., Kanungo R., Srinivasan S., Badrinath S. Pneumolysin in urine: A rapid antigen detection method to diagnose pneumococcal pneumonia in children. Indian J Med Microbiol 2002;20(4):183–6. PMID: 17657067

13. Matos J.A., Madureira D.J., Rebelo М.С. et al. Diagnosis of Streptococcus pneumoniae meningitis by polymerase chain reaction amplification of the gene for pneumolysin. Mem Inst Oswaldo Cruz 2006;101(5):559–63. DOI: 10.1590/s0074-02762006000500014

14. Lahti E., Mertsola J., Kontiokari T. et al. Pneumolysin polymerase chain reaction for diagnosis of pneumococcal pneumonia and empyema in children. Eur J Clin Microbiol Infect Dis 2006;25(12):783–9. DOI: 10.1007/s10096-006-0225-9

15. Becker R.E., Berube B.J., Sampedro G.R. Tissue-specific patterning of host innate immune responses by Staphylococcus aureus alpha-toxin. J Innate Immun 2014;6(5):619–631. DOI: 10.1159/000360006

16. Song L., Hobaugh M.R., Shustak C. et al. Structure of staphylococcal alpha-hemolysin, a heptameric transmembrane pore. Science 1996;274(5294):1859–66. DOI: 10.1126/science.274.5294.1859

17. Воробьев Д.С., Сидоров А.В., Калошин А.А. и др. Получение рекомбинантной формы белка пневмолизина Streptococcus pneumoniae. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины 2022;174(12):723–7. DOI: 10.47056/0365-9615-2022-174-12-723-727

18. Воробьев Д.С., Сидоров А.В., Калошин А.А. и др. Рекомбинантная плазмидная ДНК pSp-raPLY, кодирующая синтез рекомбинантного атоксичного белка пневмолизина Streptococcus pneumoniae, штамм Escherichia coli M15/pSp-raPLY – продуцент рекомбинантной атоксичной формы пневмолизина и получение указанного белка для разработки вакцинного препарата для профилактики пневмококковых инфекций. Патент РФ №2782598 от 31.10.2022.

19. Broecker F., Anish C., Seeberger P.H. Generation of monoclonal antibodies against defined oligosaccharide antigens. Methods Mol Biol 2015;1331:57–80. DOI: 10.1007/978-1-4939-2874-3_5

20. Nakane P.K., Kawaoi A. Peroxidase-labeled antibody. A new method of conjugation. J Histochem Cytochem 1974;22(12):1084–91. DOI: 10.1177/22.12.1084

21. Segel I.H. Biochemical calculations: How to solve mathematical problems in general biochemistry. New-York, London, Sydney, Toronto: John Wiley & Sons Inc., 1976; 441 p.

22. Levinson A.I., Tar L., Carafa C., Haidar M. Potent stimulus of immunoglobulin M rheumatoid factor production. J Clin Invest 1986;78(3):612–7. DOI: 10.1172/JCI112617

23. Falugi F., Kim H.K., Missiakas D.M., Schneewind O. The role of protein A in the evasion of host adaptive immune responses by Staphylococcus aureus. mBio 2013; 4(5):e00575-13. DOI: 10.1128/mBio.00575-13

24. Rigi G., Ghaedmohammadi S., Ahmadian G.A. Сomprehensive review on staphylococcal protein A (SpA): Its production and applications. Biotechnol Appl Biochem 2019;66(3):454–64. DOI: 10.1002/bab.1742

25. Balachandran M., Giannone R.J., Bemis D.A., Kania S.A. Molecular basis of surface anchored protein A deficiency in the Staphylococcus aureus strain Wood 46. PLoS One 2017;12(8):e0183913. DOI: 10.1371/journal.pone.0183913


Рецензия

Для цитирования:


Курбатова Е.А., Яковлева И.В., Гаврилова Н.Ф., Воробьев Д.С., Петухова Е.С., Семенова И.Б., Зайцев А.Е., Волох Ю.В., Леонова А.Ю., Поддубиков А.В., Калошин А.А., Грубер И.М. Разработка тест-системы на основе иммуноферментного анализа для детекции рекомбинантного пневмолизина Streptococcus pneumoniae. Российский биотерапевтический журнал. 2023;22(4):52-59. https://doi.org/10.17650/1726-9784-2023-22-4-52-59

For citation:


Kurbatova E.A., Yakovleva I.V., Gavrilova N.F., Vorobyev D.S., Petukhova E.S., Semenova I.B., Zaitsev A.E., Volokh Yu.V., Leonova A.Yu., Poddubikov A.V., Kaloshin A.A., Gruber I.M. Development of the test system based on enzyme immunoassay for the detection of recombinant Streptococcus pneumoniae pneumolysin. Russian Journal of Biotherapy. 2023;22(4):52-59. (In Russ.) https://doi.org/10.17650/1726-9784-2023-22-4-52-59

Просмотров: 335


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1726-9784 (Print)
ISSN 1726-9792 (Online)