Анализ изменения содержания уровней растворимых молекул CD50, CD54 и CD95 в сыворотке крови больных миомой матки в зависимости от особенностей течения заболевания (пилотное исследование)

Введение. В настоящее время актуальным является поиск циркулирующих иммунологических и воспалительных маркеров, играющих весомую роль в патогенезе миомы матки (ММ).

Цель исследования – изучить изменения сывороточного содержания растворимых молекул CD50 (sCD50),CD54 (sCD54) и CD95 (sCD95) у больных ММ в зависимости от особенностей течения заболевания.

Материалы и методы. В исследовании приняли участие 78 пациенток с ММ в возрасте 31–59 лет и 45 клинически здоровых женщин сопоставимого возраста. Больные были разделены на группы в зависимости от локализации миоматозного узла (МУ): 1-я группа (n = 17) – интерстициально-субсерозная локализация, 2-я группа (n = 16) – субсерозная локализация, 3-я группа (n = 15) – субмукозная локализация, 4-я группа (n = 15) – интерстициально-субмукозная локализации и 5-я группа (n = 15) – интерстициальная локализация. У 34,6 % пациенток число МУ составило 4–6, у 46,2 % женщин – 2–3 МУ, у 19,2 % – 1 МУ. Определение сывороточной концентрации sCD50, sCD54 и sCD95 проводили с помощью иммуноферментного анализа и их содержание выражали в условных единицах (U / ml).

Результаты. Среднестатистическая сывороточная концентрация sCD95, sCD54 и sCD50 у всех больных ММ значимо превышала показатели контрольной группы (p <0,05). Максимальный уровень тестируемых молекул обнаружен в сыворотке крови пациенток с субмукозной локализацией ММ и наличием 1 МУ. Сывороточная концентрация sCD50, sCD54 и sCD95 при субсерозной локализации ММ не отличалась от значений у здоровых женщин (p >0,05).

Заключение. Обнаруженное увеличение содержания sCD50, sCD54 и sCD95 в сыворотке крови пациенток с ММ свидетельствует об участии данных белков в иммунопатогенезе этой патологии. Несбалансированность содержания исследуемых белков наиболее выражена при субмукозной локализации ММ, что может указывать на неблагоприятное течение заболевания и служить дополнительным критерием отбора пациенток в предоперационный период.

1. Mathew R.P., Francis S., Jayaram V., Anvarsadath S. Uterine leiomyomas revisited with review of literature. Abdom Radiol (NY) 2021;46(10):4908–26. DOI: 10.1007/s00261-021-03126-4

2. Dvorská D., Škovierová H., Braný D. et al. Liquid biopsy as a tool for differentiation of leiomyomas and sarcomas of corpus uteri. Int J Mol Sci 2019;20(15):3825. DOI: 10.3390/ijms20153825

3. AlAshqar A., Reschke L., Kirschen G.W., Borahay M.A. Role of inflammation in benign gynecologic disorders: from pathogenesis to novel therapies. Biol Reprod 2021;105(1):7–31. DOI: https://doi.org/10.1093/biolre/ioab054

4. Sahar T., Nigam A., Anjum S. et al. Interactome analysis of the differentially expressed proteins in uterine leiomyoma. Anticancer Agents Med Chem 2019;19(10):1293–312. DOI: 10.2174/1871520619666190206143523

5. Governini L., Marrocco C., Semplici B. et al. Extracellular matrix remodeling and inflammatory pathway in human endometrium: insights from uterine leiomyomas. Fertil Steril 2021; 116 (5): 1404–14. DOI: 10.1016/j.fertnstert.2021.06.023

6. Protic O., Toti P., Islam M.S. et al. Possible involvement of inflammatory/reparative processes in the development of uterine fibroids. Cell Tissue Res 2016;364(2):415–27. DOI: 10.1007/s00441-015-2324-3

7. Zannotti A., Greco S., Pellegrino P. et al. Macrophages and immune responses in uterine fibroids. Cells 2021;10(5):982. DOI: 10.3390/cells10050982

8. Szydłowska I., Grabowska M., Nawrocka-Rutkowska J. et al. Markers of inflammation and vascular parameters in selective progesterone receptor modulator (ulipristal acetate)-treated uterine fibroids. J Clin Med 2021;10(16):3721. DOI: 10.3390/jcm10163721

9. Малышкина А.И., Сотникова Н.Ю., Посисеева Л. В., Анциферова Ю.С. Прогностическое значение иммунологического исследования перитонеальной жидкости у больных миомой матки. Медицинская иммунология 2005;7(4):437–40. DOI: 10.15789/1563-0625-2005-4-437-440.

10. Konenkov V.I., Koroleva E.G., Orlov N.B. et al. Blood serum levels of proinflammatory cytokines (IL-1β, IL-6, TNFα, IL-8, IL-12p70, and IFNγ) in patients with uterine myoma. Bull Exp Biol Med 2018;165(5):698–701. DOI: 10.1007/s10517-018-4245-0

11. Sikorski R., Kapeć E., Zaleska W. Serum levels of proinflammatory cytokines in women with uterine myomas. Ginekol Pol 2001;72(12A):1485–8. PMID: 11883301

12. Novikov V.V., Karaulov A.V. Storm of soluble differentiation molecules in COVID-19. Immunologiya 2022;43(4):458–67. DOI: 10.33029/0206-4952-2022-43-4-458-467

13. Bleijs D.A., Geijtenbeek T.B., Figdor C.G., van Kooyk Y. DC-SIGN and LFA-1: a battle for ligand. Trends Immunol 2001;22(8):457–63. DOI: 10.1016/S1471-4906(01)01974-3

14. Wu M., Tong X., Wang D. et al. Soluble intercellular cell adhesion molecule-1 in lung cancer: A meta-analysis. Pathol Res Pract 2020;216(10):153029. DOI: 10.1016/j.prp.2020.153029

15. Kovács P., Joó J.G., Tamás V. et al. The role of apoptosis in the complex pathogenesis of the most common obstetrics and gynaecology diseases. Physiol International 2020;107(1):106–19. DOI: 10.1556/2060.2020.00014

16. Guégan J.P., Ginestier C., Charafe-Jauffret E. et al. CD95/Fas and metastatic disease: What does not kill you makes you stronger. Semin Cancer Biol 2020;60:121–31. DOI: 10.1016/j.semcancer.2019.06.004

17. Basta P., Mach P., Pitynski K. et al. Differences in the blood serum levels of soluble HLA-G concentrations between the menstrual cycle phases and menopause in patients with ovarian endometriosis and uterine leiomyoma. Neuro Endocrinol Lett 2009;30:91–8. PMID: 19300397

18. Мамаева М.Е., Новиков Д.В., Алясова А.В. и др. Содержание олигомерной и суммарной фракций растворимых молекул CD38 в сыворотке крови больных миомами матки. Современные технологии в медицине 2014;6(4):140.

19. Мамаева М.Е., Шумилова С.В., Казацкая Ж.А. и др. Сывороточное содержание растворимых молекул HLA I класса и HLA-DR у больных патологией шейки и тела матки. Современные технологии в медицине 2014;6(2):85.