Preview

Российский биотерапевтический журнал

Расширенный поиск

ТРАНСФЕКЦИЯ IN VITRO ЭКЗОГЕННОЙ ДНК КЛЕТОК ЯЙЦЕВОДА КУР

https://doi.org/10.17650/1726-9784-2015-14-1-29-31

Аннотация

Получение фармакологических белков из белка яйца трансгенной птицы представляет собой довольно сложную и дорогостоящую технологию, в одну из основных задач которой входит создание экспрессирующего вектора. Целью исследований являлось получение и оценка временной экспрессирующей системы на основе первичной культуры трансфецированных экзогенной ДНК эпителиальных клеток куриного яйцевода. Было изучено три способа выделения клеток яйцевода кур, при этом только при получении клеток методом инкубации фрагмента яйцевода курицы в растворе Трипсина-Версена при 38 °С, при механическом удалении верхнего слоя клеток с его внутренней поверхности удалось получить гомогенную, стабильную первичную культуру, способную к многократным пассажам. Через 2-3 суток монослой пассировали и еще через 1-2 суток уже использовали для трансфекции. Получение культуры не требовало поэтапной или комплексной обработки яйцевода ферментами, дополнительного оборудования и реактивов для удаления стромальных клеток. Культура клеток яйцевода была успешно трансфецирована с помощью генной конструкции на основе вектора pIRES EGFP2 (фирма Clontech, США) и препарата липосом «Lipofectamin® 2000», при этом число экспрессирующих белок GFP эпителиальных клеток яйцевода составил 5-8 % от общего числа трансфецированных клеток. С помощью разработанной временной экспрессирующией системы в течение 4-5 суток в условиях in vitro было проведено тестирование экспрессии экзогенного гена.

Об авторах

А. В. Самойлов
ФГБНУ ВНИИ технологии консервирования, Московская область, г. Видное
Россия


Наталья Михайловна Сураева
ФГБУ «РОНЦ им. H.H. Блохина»
Россия


Список литературы

1. Самойлов A.B., Сураева Н.М., Барышников А.Ю. и др. Использование сперматозоидов петуха в качестве переносчиков чужеродной ДНК с целью разработки и совершенствования методов получения продуцентов терапевтических белков // Российский биотерапевтический журнал. - 2011. - Т. 10, № 3. - С. 53-6.

2. Самойлов A.B., Кесян А.З., Сураева Н.М. Получение трансгенных кур с геном гранулоцитарного колониестимулирующего фактора человека методом опосредованного генного переноса с помощью сперматозоидов // Известия Российской академии наук. Серия биологическая. - 2013. - № 5. - С. 517-21.

3. Сураева Н.М. Современные подходы к проблеме введения чужеродных генов в половые клетки животных // Российский биотерапевтический журнал. - 2004. - Т. 3, № 4. - С. 29-37.

4. Сураева Н.М., Толмазова А.Г. Выделение и характеристика первичных половых клеток из гонад 6 -9-суточных эмбрионов кур с целью совершенствования метода получения трансгенной птицы // Доклады Российской академии сельскохозяйственных наук. - 2004. - № 2. - С. 29-31.

5. Сураева Н.М., Бырышников А.Ю., Фисинин В.И., Прокофьев М.И. Изучение эффективности различных способов переноса репортерного гена в эмбриональные клетки кур // Известия Российской академии наук. Серия биологическая. - 2008. - № 1. - С. 18-23.

6. Сураева Н.М., Самойлов A.B. Получение фармацевтических белков с помощью трансгенной птицы // Вестник РОНЦ им. Блохина H.H. РАМН. - 2009. - Т. 20, № 4. - С. 19-25.

7. Фрешни Р.Я. Культура животных клеток. Практическое руководство. - М.: Бином. Лаборатория знаний, 2010. - 691 с.

8. Gao B., Sun H.C., Song C.Y. et al. Transfection and expression of exogenous gene in laying hens oviduct in vitro and in vivo // Journal of Zhejiang University Science. - 2005. - 6(2). - P. 137-41.

9. Kim S.H., Choi J.Y., Sihn C.R. et al. Induction of apoptosis in chicken oviduct cells by C2-11. ceramide // Mol. Cells. - 2005. - 19(2). - P. 185-90.

10. Li S., Zhenyu A M., Zhang A. et al. Induction of CXC chemokine messenger-RNA expression in chicken oviduct epithelial cells by salmonella enterica serovar enteritidis via the type three secretion system-1 // AVIAN DISEASES. - 2009. - 53. - P. 396-404.

11. Oishi I., Sungtae S., Yoshii K. et al. cre-loxp-regulated expression of monoclonal antibodies driven by an ovalbumin promoter in primary oviduct cells // bmc biotechnology. - 2011. - 11(5). - p. 1-8.

12. Prokofiev M.I., Ernst L.K., Suraeva N.M. et al. Bovine oocyte maturation, fertilization and further development in vitro and after transfer into recipient // Theriogenology. - 1992. - 38. - P. 461-9.


Рецензия

Для цитирования:


Самойлов А.В., Сураева Н.М. ТРАНСФЕКЦИЯ IN VITRO ЭКЗОГЕННОЙ ДНК КЛЕТОК ЯЙЦЕВОДА КУР. Российский биотерапевтический журнал. 2015;14(1):29-31. https://doi.org/10.17650/1726-9784-2015-14-1-29-31

For citation:


Samoilov A.V., Suraeva N.M. TRANSFECTION OF EXOGENOUS DNA IN CHICKEN OVIDUCT CELLS IN VITRO. Russian Journal of Biotherapy. 2015;14(1):29-31. (In Russ.) https://doi.org/10.17650/1726-9784-2015-14-1-29-31

Просмотров: 316


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1726-9784 (Print)
ISSN 1726-9792 (Online)